07.11.2017
31.10.2017
21.10.2017
21.10.2017
21.10.2017
04.10.2017
04.10.2017
28.09.2017
01.09.2017
31.08.2017
Заливка при определении патогенов
 20.06.2014

Опытному гистологу, располагающему хорошим оборудованием, получение максимальной информации компенсирует усилия, затраченные на сбор и хранение образцов, подлежащих анализу. Выбор способа заливки зависит от того, какова главная цель исследования: определение специфичности локализации патогена в хозяине, в органе, ткани или в клетке; изучение морфологии патогена и необходимость проведения измерений и фотографирования или быстрота получения информации, а также и от природы образца. Обычная процедура заливки сводится к следующому: 70%-ный этанол — 12 ч, 96%-ный этанол — 6 ч, этанол : бутанол (1:1)—12 ч, бутанол — 6 ч, бутанол : парафин (1:1)—12 ч, парафин — 6 ч в вакууме.

1. Парафин

Парафин имеется повсюду и растворяется в большинстве углеводородных растворителей. Общепринятые способы заливки описаны во всех справочниках по гистологии. Ho получить с его помощью интактные срезы толщиной менее 6 м;к практически невозможно, поэтому для точного определения морфологии патогенного микроорганизма или местонахождения его в особых клетках не следует заливать материал в парафин.
2. Парапласт

Парапласт — среда на основе парафина, смешанного с пластическими полимерами (т. п. 56—57 °С), может заменить парафин при заливке материала. Срезы толщиной до 6 мк можно получать, если вся ткань обладает примерно одинаковой твердостью. Так, если желательно получить тонкие срезы, то до заливки в парапласт нужно удалить экзоскелет брюшка исследуемого экземпляра, чтобы избежать слишком сильного сдавливания ткани. Интактные срезы можно быстро изготовить, если достаточна получаемая толщина.
3. Сложноэфирный воск

Основой сложноэфирного воска 1960 является дистеаратдиэтиленгликоля, более твердый, чем обычный парафин, с несколько более низкой точкой плавления. Его выпускает лаборатория английской фирмы The British Drug Houses, Ltd., в Пуле. Он применяется для изготовления срезов толщиной до 4 мк с образцов, состоящих из тканей неодинаковой твердости, как, например, головная капсула насекомых. Идентичность мягкой ткани сохраняется, поскольку сжатия тонких срезов не происходит. Этот способ обеспечивает четкую видимость внутриклеточных паразитов, т. е. позволяет определять морфологию и размеры спор Protozoa или пролиферирующих форм. Однако на изготовление срезов уходит гораздо больше времени, чем при заливке в парапласт или в парафин.
Подробнее описание см. у Стидмеиа.
4. Электронная микроскопия

Методы заливки материала для электронной микроскопии описаны вместе с соответствующими способами фиксации далее.